рефераты конспекты курсовые дипломные лекции шпоры

Реферат Курсовая Конспект

Видовий склад та популяційний рівень мікроорганізмів порожнини товстої кишки білих щурів за перорального введення ніпазолу

Видовий склад та популяційний рівень мікроорганізмів порожнини товстої кишки білих щурів за перорального введення ніпазолу - раздел Философия, На тему: ВПЛИВ НІПАЗОЛУ НА ФІЗІОЛОГО-БІОХІМІЧНІ ПОКАЗНИКИ МІКРОБОЦЕНОЗУ КИШЕЧНИКА ЩУРІВ Контрольну Групу Тварин Складали 26 Статевозрілих Білих Щурі Обох Статей. Про...

Контрольну групу тварин складали 26 статевозрілих білих щурі обох статей. Проведені нами мікробіологічні дослідження виявили у складі мікрофлори порожнини товстої кишки інтактних тварин бактерії 15 родів (табл. 3.1).

За індексом сталості (С%) та показником частоти виявлення (Рі) виділені мікроорганізми порожнини товстої кишки можна розташувати в такому порядку: бактерії родів Bacteroides, Bifidobacterium, Lactobacillus, Escherichia, Enterococcus, Staphylococcus (С% – 100,0 %; Рі – 0,10), Eubacterium (С% – 76,9%; Рі – 0,08), Fusobacterium (С% – 53,8%; Рі – 0,06), Prevotella (С% – 50,0%; Рі – 0,05).

Таблиця 3.1

Видовий склад та показники мікрофлори порожнини товстої кишки

контрольних тварин (білих щурів)

Мікроорганізми Кількість тварин (n = 26) Виділено штамів (n) Індекс сталості (С%) Показник частоти виявлення (Рі)
Bacteroides 100,0 0,10
Prevotella 50,0 0,05
Bifidobacterium 100,0 0,10
Lactobacillus 100,0 0,10
Eubacterium 76,9 0,08
Fusobacterium 53,8 0,06
Clostridium 15,4 0,02
Peptococcus 34,6 0,04
Peptostreptococcus 38,5 0,04
Escherichia coli лактозопозитивні 100,0 0,10
Proteus 26,9 0,03
Enterococcus 100,0 0,10
Staphylococcus 100,0 0,10
Streptococcus 26,9 0,03
Candida 34,6 0,04
           

 

Бактерії родів Peptostreptococcus (С% – 38,5%, Рі – 0,04), Peptococcus (С% – 34,6%, Рі – 0,04) та гриби роду Candida (С% – 34,6%, Рі – 0,04) виявлялися у даному біотопі з меншою частотою. Рідко з вмісту порожнини товстої кишки висівалися представники родів Proteus і Streptococcus, Clostridium (С% – 26,9%, Рі – 0,03; С% – 15,4%, Рі – 0,02, відповідно).

Таким чином, до резидентних бактерій, які персистують у порожнині товстої кишки інтактних білих щурів, належать бактерії родів Bacteroides, Bifidobacterium, Lactobacillus, Escherichia, Enterococcus, Staphylococcus, Eubacterium, Prevotella, Fusobacterium. Представники родів Peptococcus, Peptostreptococcus, Candida можна віднести до факультативної мікрофлори товстого кишечника, які визначаються нечасто. Бактерії родів Proteus, Streptococcus та Clostridium зустрічаються рідко.

Проведено дослідження впливу антимікробного консерванту ніпазолу у концентрації 10 мг/кг на видовий склад та популяційний рівень мікрофлори порожнини товстої кишки. Ніпазол вводили у вигляді водно-гліцеринового розчину внутрішньошлунково. Динаміку зміни мікробоценозу порожнини товстої кишки досліджували через 4, 7, 11, 14 діб з моменту його введення.

Результати дослідження впливу ніпазолу на кількісний та якісний склад мікрофлори порожнини товстої кишки білих щурів наведено у табл. 3.2.

Одержані результати дають змогу стверджувати, що у складі мікрофлори контрольної групи тварин найвищий популяційний рівень мають бактерії родів Bacteroides, Prevotella, Bifidobacterium, Lactobacillus, Eubacterium, Fusobacterium, Peptococcus, Peptostreptococcus, Enterococcus. Значно меншою є кількість мікробних клітин у вмісті товстої кишки бактерій родів Clostridium та Proteus. Лактозонегативні види роду Escherichiа та бактерії роду Klebsiella у складі мікрофлори товстої кишки інтактних тварин не зустрічаються.

 

Таблиця 3.2

Популяційний рівень мікрофлори порожнини товстої кишки білих щурів

за впливу 10 мг/кг ніпазолу

Мікроорганізми Кількість мікроорганізмів, lg КУО/мл
Контроль 4 день 7 день 11 день 14 день
Bacteroides 9,17±0,68 9,24±0,25 9,08±0,32 8,78±0,35 8,70±0,34
Prevotella 9,03±0,34 8,90±0,47 8,87±0,45 9,19±0,57 9,48±0,78
Bifidobacterium 8,88±0,51 7,00±0,32* 4,78±0,22*** 4,0±0,21*** 3,0±0,17***
Lactobacillus 9,14±0,56 9,22±0,63 8,90±0,34 7,41±0,44 8,62±0,33
Eubacterium 8,74±0,38 8,49±0,33 8,15±0,25 7,18±0,32 7,01±0,48
Fusobacterium 8,23±0,24 7,90±0,39 8,30±0,24 8,60±0,65 8,81±0,41 **
Clostridium 3,30±0,15 3,70±0,42 3,93±0,39 4,88±0,31 ** 4,90±0,16 **
Peptococcus 9,09±0,22 9,30±0,38 9,18±0,65 8,48±0,48 8,14±0,34
Peptostreptococcus 8,88±0,53 8,48±0,24 8,0±0,50 8,95±0,37 8,75±0,51
Escherichia coli лактозопозитивні 5,65±0,25 4,93±0,14 4,70±0,34 4,00±0,28** 3,18±0,12***
Escherichia coli лактозонегативні 0,00 5,09±0,20* 5,58±0,31** 6,14±0,23** 6,84±0,24***
Proteus 3,23±0,19 4,80±0,33*** 4,86±0,22*** 5,70±0,21*** 7,11±0,23***
Klebsiella 0,00 3,90±0,23*** 4,43±0,26*** 4,56±0,21*** 4,80±0,38***
Enterococcus 8,03±0,49 7,00±0,24 5,18±0,27** 4,98±0,19** 3,75±0,14**
Staphylococcus 5,08±0,26 6,04±0,31* 6,37±0,24** 6,90±0,27*** 7,13±0,27***
Streptococcus 6,24±0,32 5,99±0,39 6,11±0,20 5,85±0,33** 6,10±0,34**
Candida 6,98±0,34 5,50±0,42 4,22±0,19 4,32±0,28 4,03±0,15

 

Примітка: вірогідність між вказаними групами * - р<0,05, ** - р<0,01, ***- р <0,001

 

Введення тваринам ніпазолу у досліджуваній концентрації призводить до зниження популяційного рівня автохтонних облігатних бактерій родів Bifidobacterium, Enterococcus, Escherichia та грибів роду Candida на 4 день дослідження, представників родів Eubacterium, Peptostreptococcus на 7 день та Peptococcus і Lactobacillus на 11 день експерименту, порівняно з таким у контрольних тварин. До 14 дня дослідження після такого зменшення знову зростає чисельність тільки бактерій родів Lactobacillus і Peptostreptococcus до значення, близького в інтактних тварин.

Відбувається збільшення кількості у складі порожнинної мікрофлори на 4 день введення консерванту представників родів Proteus, Staphylococcus, а на 7 та 14 дні ще і бактерій родів Clostridium та Fusobacterium, відповідно, порівняно з чисельністю даних мікроорганізмів у інтактних щурів.

Крім того, на 4 день дослідження відбувається контамінація порожнини товстої кишки лактозонегативними представниками родуEscherichia та бактеріями роду Klebsiella.

Як свідчать обчислені нами показники на основі одержаних даних (табл. 3.3), на 7 та 11 день введення ніпазолу спостерігається зменшення індексу сталості бактерій роду Eubacterium на 10,3% і 43,6%, відповідно, порівняно з контролем. На 11 і 14 дні експерименту цей показник знижується на 33,4% і для мікроорганізмів Bifidobacterium та лактозопозитивних представників роду Escherichia.

На 4 день введення консерванту спостерігається зростання індексу сталості бактерій родів Clostridium і Proteus у 2,2 та 2,5 рази, відповідно, порівняно з контролем (див. табл. 3.3). Також відбувається збільшення індексу сталості представників роду Prevotella, який на 14 день становить 100,0%, тобто на 50% більше, порівняно з контролем.

При цьому відбувається контамінація порожнини товстої кишки досліджуваних тварин на 4 день дослідження лактозонегативними представниками роду Escherichia (C% – 66,6%, Pi – 0,05) та бактеріями роду

Таблиця 3.3

Вплив 10 мг/кг ніпазолу на склад мікрофлори порожнини

товстої кишки білих щурів

Мікроорганізми Показники Основні групи білих щурів (по 3 тварини)
Контроль 4 день 7 день 11 день 14 день
Bacteroides C%; Pі 100,0; 0,10 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Prevotella C%; Pі 50,0; 0,05 33,3; 0,03 66,6; 0,05 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Bifidobacterium C%; Pі 100,0; 0,10 100,0; 0,08 100,0; 0,08 66,6; 0,05 33,3; 0,03
Lactobacillus C%; Pі 100,0; 0,10 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Eubacterium C%; Pі 76,9; 0,08 100,0; 0,08 66,6; 0,05 33,3; 0,03 33,3; 0,03
Fusobacterium C%; Pі 53,8; 0,06 66,6; 0,05 66,6; 0,05 66,6; 0,05 66,6; 0,05
Clostridium C%; Pі 15,4; 0,02 33,3; 0,03 33,3; 0,03 66,6; 0,05 66,6; 0,05
Peptococcus C%; Pі 34,6; 0,04 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03
Peptostreptococcus C%; Pі 38,5; 0,04 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03
Escherichia coli лактозопозитивна C%; Pі 100,0; 0,10 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08 66,6; 0,05
Escherichia coli лактозонегативна C%; Pі 0,0; 0,0 66,6; 0,05 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Proteus C%; Pі 26,9; 0,03 66,6; 0,05 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Klebsiella C%; Pі 0,0; 0,0 33,3; 0,03 66,6; 0,05 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Enterococcus C%; Pі 100,0; 0,10 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Staphylococcus C%; Pі 100,0; 0,10 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08 100,0; 0,08
Streptococcus C%; Pі 26,9; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03
Candida C%; Pі 34,6; 0,04 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03 33,3; 0,03

Примітка: С% – індекс сталості, Pі – показник частоти виявлення.

Klebsiella (C% – 33,3%, Pi – 0,03).

Отже, у експериментальних тварин під впливом введення ніпазолу у досліджуваній дозі спостерігаються зміни не тільки складу мікробоценозу порожнини товстої кишки, а й співвідношення в ньому різних мікроорганізмів. Константними представниками мікрофлори порожнини товстої кишки за даних умов, порівняно з такими в інтактних тварин, стають мікроорганізми родів Clostridium, Prevotella, Proteus, Klebsiella і лактозонегативні представники роду Escherichia.

– Конец работы –

Эта тема принадлежит разделу:

На тему: ВПЛИВ НІПАЗОЛУ НА ФІЗІОЛОГО-БІОХІМІЧНІ ПОКАЗНИКИ МІКРОБОЦЕНОЗУ КИШЕЧНИКА ЩУРІВ

БІОЛОГІЧНИЙ ФАКУЛЬТЕТ... КАФЕДРА МІКРОБІОЛОГІЇ... УДК...

Если Вам нужно дополнительный материал на эту тему, или Вы не нашли то, что искали, рекомендуем воспользоваться поиском по нашей базе работ: Видовий склад та популяційний рівень мікроорганізмів порожнини товстої кишки білих щурів за перорального введення ніпазолу

Что будем делать с полученным материалом:

Если этот материал оказался полезным ля Вас, Вы можете сохранить его на свою страничку в социальных сетях:

Все темы данного раздела:

Актуальність теми.
Організм людини і його нормальна мікрофлора є єдиним взаємопов’язаним і взаємозалежним природним комплексом, стан якого у значній мірі визначає здоров’я людини. Нормальна мікрофлора є од

Сучасне уявлення про мікробоценоз кишечника людини
Загальна чисельність мікроорганізмів, що мешкають в різних біотопах людського організму, досягає величини порядку 1015. Відносини в цій спільноті мають філогенетичне давнє походження і ж

Коротколанцюгові жирні кислоти як продукти метаболізму мікрофлори кишечника
Численними дослідженями було встановлено, що в процесі травлення за участю мікрофлори товстої кишки утворюються низькомолекулярні метаболіти: гази (Н2, СО2, СН4, NН

Загальна характеристика консервантів
Важливе значення при оцінці якості продукту має його мікробіологічний контроль. Потрапляння в продукт мікроорганізмів у процесі виробництва, зберігання чи використання може призвести до видимої втр

Механізми дії консервантів
Консерванти сповільнюють ріст і розвиток бактерій, плісеневих грибів і дріжджів, а також впливають на обмін речовин у них. Вони можуть мати фунгістатичну / бактеріостатичну дію, або фунгіцидну / ба

Спектр дії консервантів
Ефективність певних консервантів неоднакова щодо плісеневих грибів, дріжджів і бактерій, тобто вони не можуть бути ефективними проти всього спектру мікроорганізмів (табл. 1.2). Більшість консервант

Виникнення резистентності мікроорганізмів до консервантів
Відомо, що мікроорганізми можуть набувати стійкості до діючих на них речовин. Здатність мікроорганізмів зі збільшенням частоти впливів витримувати вищі концентрації антимікробних речовин називають

Ефіри n-оксибензойної кислоти (парабени) як консерванти
Складні ефіри парагідроксибензойної кислоти – парабени (ніпагін, ніпазол) знайшли широке застосування в харчовій, парфюмерній і фармацевтичній промисловості багатьох країн. Вони включені в фармакоп

Загальна характеристика консервантів
У роботі було використано антимікробний консервант – пропілпарагідроксибензоат (ніпазол), що застосовують у фармацевтичній та косметичній промисловості з метою попередження або інгібування росту мі

Поживні середовища, які використовували для дослідження
Для проведення досліджень використовували сухі поживні середовища фірми "Меrck" та фірми "Scharlau", які є валідовані та не відрізняються за ростовими і селективними вл

Виділення грамнегативних неспороутворюючих облігатно анаеробних бактерій
Виділення анаеробних бактерій вимагає застосування ряду селективних середовищ. Середовища готували extempore або у випадку, якщо вони були приготовані напередодні, зберігали їх в анаеробних

Ізоляція та ідентифікація грампозитивних облігатно анаеробних бактерій
Для виділення бактерій роду Bifidobacterium використовували напіврідке збагачене поживне середовище (соєво-казеїновий бульйон) з агаром та азидом натрію у концентрації 100 мг/л з метою попер

Виділення факультативно анаеробних мікроорганізмів
Бактерії родини Enterobacteriaceae виділяли, використовуючи МакКонкі агар. Солі жовчних кислот і кристалвіолет, що входять до складу даного середовища, пригнічують ріст грампозитивної мікроф

Визначення абсолютного вмісту КЖК у вмістимому товстого кишечника
Дослідження впливу пропілпарагідроксибензоату проводилось на статевозрілих нелінійних білих лабораторних щурах, яких утримували в стандартних умовах. Дослідним тваринам, з допомогою зонда

РЕЗУЛЬТАТИ ДОСЛІДЖЕНЬ ТА ЇХНЄ ОБГОВОРЕННЯ
У процесі еволюції між організмом людини і оточуючими його видами мікроорганізмів виникли симбіотичні взаємовідносини, завдяки яким макроорганізм й бактерії, що його населяють, стали поєднаними між

Вплив пропілпарагідроксибензоату на склад коротколанцюгових жирних кислот у вмістимому товстої кишки білих щурів
  Важливе значення у взаємовідносинах макроорганізм - мікробоценоз має обмін низькомолекулярними метаболітами, що утворюються представниками аутохтонної мікрофлори, зокрема КЖК [11, 2

Характеристика лабораторії
Експериментальна частина дипломної роботи виконувалась в лабораторії на кафедрі мікробіології Львівського національного університету імені Івана Франка. Мікробіологічна лабораторія включає

Аналіз методів дослідження та характеристика обладнання
1. електроприлади: Автоклав Принцип його роботи базується на збільшенні температури при підвищенні тиску. Використовують автоклав для стерилізації посуду і поживних середовищ для мікроорга

Характеристика об’єкту дослідження, речовин, їхні небезпечні властивості
Об’єкт дослідження ─ факультативно-анаеробна нормальна мікрофлора кишківника білих щурів, до складу якої входили бактерії таких родів: Escherichia, Enterococcus, Staphylococcus, Streptococ

Організація робочого місця і роботи
Для всіх дослідників, що приступають до роботи в лабораторії, проводиться вступний інструктаж. Він полягає в детальному ознайомленні з устаткуванням, правильною організацією робочого місця, з безпе

Санітарно-гігієнічні вимоги до умов праці
Мікробіологічну лабораторію потрібно утримувати у чистоті. В ній не повинні знаходитись сторонні предмети. Слід регулярно проводити гігієнічні прибирання лабораторних приміщень. Забезпечити повну с

Заходи безпеки під час роботи з обладнанням, об’єктом дослідження і речовинами
Заходи безпеки у разі використання автоклавом АТ-2 1. Для виключення можливості пошкодження електричним струмом, автоклав повинен бути заземленим з опором 4 Ом. 2. Забороняється п

Протипожежні заходи у виробничих приміщеннях
Для попередження пожежі в лабораторії необхідно: · не захаращувати робочі місця і проходи · слідкувати за закриттям газових кранів · при виявленні запаху газу не можна ко

ЛІТЕРАТУРА
  1. Аксель Е.М., Давыдов М.М., Ушакова Т.И. Злокачественные новообразования желудочно-кишечного тракта: основные статистические показатели и тенденции // Современная онкология. – 200

Хотите получать на электронную почту самые свежие новости?
Education Insider Sample
Подпишитесь на Нашу рассылку
Наша политика приватности обеспечивает 100% безопасность и анонимность Ваших E-Mail
Реклама
Соответствующий теме материал
  • Похожее
  • Популярное
  • Облако тегов
  • Здесь
  • Временно
  • Пусто
Теги