Дезинфекция, ее виды и методы. Стерилизация изделий медицинского назначения

Самарский государственный медицинский университет

"УТВЕРЖДАЮ" Заведующий кафедрой инфекционных болезней с курсом эпидемиологии

Введение.

Непременным условием реализации механизма передачи эпидемического процесса является наличие возбудителей инфекционных заболеваний на различных объектах внешней среды, при контакте с которыми происходит заражение людей. Для снижения интенсивности инфекционной заболеваемости и ликвидации отдельных инфекционных болезней проводятся противоэпидемические мероприятия направленные на уничтожение возбудителей болезней ( бактерии, вирусы, риккетсии, простейшие, грибы, токсины и др.) различными способами.

В комплексе мер по борьбе инфекционными болезнями, рассмотренных на предыдущей лекции, дезинфекция не выделяется как отдельное мероприятие, так как применение ее вне общей системы ( вакцинация, госпитализация и т.д. ) как самостоятельного противоэпидемического мероприятия оказывается мало эффективным. Дезинфекция является одним из существенных звеньев комплекса противоэпидемических мероприятий в целом.

 

1. Дезинфекция, ее виды и методы. Стерилизация изделий медицинского назначения.

 

Дезинфекция - это процесс уничтожения или удаления возбудителей на объектах окружающей среды ( факторах передачах ) как в профилактических целях, так и по эпидемическим показаниям.

Целью дезинфекции является - уничтожения как патогенных так и условно – патогенных микроорганизмов путем разрыва механизма передачи; этим она отличается от стерилизации, при которой уничтожают все виды микроорганизмов и их споровые формы, т.е. достигается полное их обеспложивание.

В настоящее время дезинфектологии ( дезинфекционное дело ) включает в себя несколько разделов:

1. Собственно дезинфекцию.

2. Дезинсекцию.

3. Дератизацию.

4. Стерилизацию.

Дезинфекционные мероприятия специфичны и направлены на уничтожение возбудителей определенной инфекционной болезни. При этом учитывается механизм передачи возбудителя данной инфекции, степень возможного обсеменения окружающей среды и другие эпидемиологические признаки.

Для проведения дезинфекции необходимо знать:

- что подлежит обеззараживанию;

- когда должна быть проведена дезинфекция;

- чем ее проводить;

- как ее осуществить.

Дезинфекция

 

Профилактическая Очаговая

Текущая Заключительная

Её выполняют тогда, когда источник инфекции не обнаружен, но предполагается его наличие. При проведении профилактической дезинфекции исходят из… Таким образом, целью профилактической дезинфекции является создание таких… Профилактическая дезинфекция обязательно проводится на эпидемически значимых объектах:

Дезинфектанты, которые применяются для предстерилизационной и стерилизационной обработки медицинского инструментария и санитарно – хозяйственного имущества.

В дезинфекционной практике наиболее часто используют влажный метод с применением соответствующей аппаратуры позволяющей создавать различные виды дезинфекционных аэрозолей:

1.Пульсфог ( Германия) - генератор дисперсионно - сконденсированного тумана :

Порожний вес - 7 кг.

Емкость резервуара - 9 л.

Средний расход бензина -1,5 л/час.

Средняя производительность -15 л/час.

Дальность распыления аэрозольного тумана -15 м.

Время непрерывной работы -1,5 ч.
Средний размер капель тумана -10 мкм.
Габариты -106 х 29 х 33 см

2. Штиль (. Германия) пневматический аэрозольный генератор ранцевый:

Порожний вес - 10,9 кг.

Емкость резервуара -14 л.

Дальность распыления: вертикально -11,5 м; горизонтально -12 м.

Рабочий объем цилиндра - 56,5 куб. м.

Мощность - 2,5 кВт .

Объем топливного бака -1,5 л.

Средний размер капель тумана -10 - 20 мкм.

Габариты-625 х 480 х 280 мм.

3. Ранцевый опрыскиватель Квазар УР-15

Порожний вес - 4,5 кг.

Емкость резервуара – до 15 л.

Рабочее давление - 0,1-0,4 Мра.

Длина телескопической штанги -1,2 м.

Габариты -380 х 500 х 200 мм.

4. АМ-150 пневматический аэрозольный генератор ранцевый (фирма О1ео-Мас, Италия)

Порожний вес - 11,5 кг.

Емкость резервуара -14 л.

Дальность распыления: вертикально -8м; горизонтально –Юм.

Рабочий объем цилиндра - 47,8 куб. м.

Мощность - 1,3 кВт Объем топливного бака -1,7 л

Габариты -440 х 290 х 670 мм

Наиболее широко применяются в настоящее время дезинфицирующие вещества, относящиеся к следующим химическим группам соединений:

I.Катионные поверхностно - активные вещества ( четвертично - аммониевые соединения ):фиам, самаровка, лизафин ( Россия), вапусан - 2000 ( Швеция ), деконекс 50 фф, деконекс 50 плюс, деконекс 55 эндо, деконекс денталь бб ( Швейцария ), дюльбак ДТБ/Л ( Франция ) и др..

II. Хлорактивные препараты: деохлор, пюржавель, жавельон, тепсихлор 70 А (Франция), пресепт (США ), ДП - 2 Т, хлорамин Б или ХБ, сульфохлорантин (Россия), клорсепт ( Ирландия ) и др.

III. Амфолитные поверхностно - активные вещества:амфолан (Россия).

IV. Перекисные соединения:перекись водорода, гидроперит (Россия), дезоксон 1-4 (Россия), надуксусная и надмуравьиная кислоты.

V. Производные фенола (галоидизированные фенолы, нафтолы, хлорированные бифенолы): хлорбетанафтол, гексахлорафен.

VI. Иодофоры(иод, бром и их соединения) -комплекс иода с поверхностно - активными соединениями, дибромантин.

VII.Производные гуанидина:лизетол (Германия), хлоргексидин, дезофран (Россия) и др.

VIII. Щелочи:гидроксид натрия (едкий натр, каустическая сода), аммиак, карбонат натрия (углекислый натр, сода), карбонат калия (углекислый калий, поташ), едкая известь (негашенная известь, жженая известь), метаксиликат натрия.

IX. Альдегиды:гигасепт ФФ (Германия), сайдекс (США), формальдегид, глутаровый альдегид (Россия).

X. Кислоты:хлорноводородная кислота, уксусная кислота, молочная кислота.

XI. Спирты, алкоголи:микроцид - ликвид , бациллол плюс , стериллиум (Германия), др.

Постановлением № 11 от 18.11.94 Госсанэпиднадзором РФ с 1995 года введена обязательная регистрация отечественных и зарубежных дезинфекционных препаратов. Все рассмотренные средства прошли регистрацию и рекомендованы к применению и реализации на территории России, конкретная сфера применения каждого препарата определяется Методическими указаниями Государственного комитета санитарно-эпидемиологического надзора РФ.

 

Все изделия соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также изделия, которые соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать её повреждения, после предстерилизационной очистки подвергаются стерилизации.

Стерилизация – это полное уничтожение различных форм микроорганизмов, включая и споровые, с помощью физических факторов и химических средств на веществах и предметах. Стерилизация обеспечивает гибель в стерилизуемых изделиях вегетативных и споровых форм патогенных и 12 непатогенных микроорганизмов. Стерилизация тесно связана с асептикой и антисептикой.

Антисептика комплекс лечебно – профилактических мероприятий направленных на уничтожение микробов в ране другом патологическом образовании или организме в целом.

Асептика система мероприятий направленных на предупреждение внедрения возбудителей инфекции в рану, ткани, органы, полости тела больного при хирургических операциях, перевязках и диагностических процедурах.

Стерилизация многоэтапный процесс, юридически узаконенный на сегодня ОСТ 42 – 21 – 2 – 85 и состоит из трёх этапов:

- дезинфекция;

- предстерилизационная очистка;

- стерилизация.

Первый этап обработка изделий медицинского назначения – дезинфекция. Целью её является – обеспечение профессиональной защиты от возможного инфицирования медицинских изделий. Медицинские изделия подвергаются дезинфекции обязательно при семи показаниях:

- которые использованы при гнойных операциях или оперативных манипуляциях у инфекционных больных;

- у пациентов, являющихся носителями патогенных микроорганизмов и Hbs – антигена;

- больных и носителей Вич – инфекции;

- относящихся к группам риска заболевания гепатитом и Вич – инфекцией;

- от пациентов, перенесших гепатит с неустановленным диагнозом;

- используемые для введения живых вакцин;

- все изделия по эпидемическим показаниям.

Дезинфекцию чаще всего осуществляют путем погружения инструментов, игл, шприцев в рабочий дезинфекционный раствор,

Второй этап предстерилизационная очистка. В значительной мере определяет степень эффективности стерилизации и снижает риск пирогенных реакций. Цель – обеспечение удаления белковых, жировых и механических загрязнений путем:

- полного удаления остаточных количеств лекарственных препаратов;

- и снижение исходной контаминации микроорганизмов.

Предстерилизационная очистка определяет в значительной степени эффективность стерилизации и снижает риск пирогенных реакций. Методы, средства, и режимы предстерилизационной обработки представлены в нормативных документах.

Третий этап обработки изделий медицинского назначения – стерилизация. Стерилизацию проводят различными методами:

- паровым, который осуществляется в паровых стерилизаторах - автоклавах, действующим агентом при этом является насыщенный пар под давлением.

- воздушным, осуществляется в воздушных стерилизаторах, действующий агент – сухой горячий воздух, температурой 160 – 180 ⁰ С;

- химическим ( применение растворов химических средств). Стерилизация изделий химическими растворами является вспомогательным методом, поскольку изделия нельзя стерилизовать в упаковке, а по окончанию стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью, что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению простерилизованных изделий микроорганизмами. Простерилизованные химическими растворами предметы, как правило, используют тут же после обработки.

- газовый – метод применяют тогда, когда невозможно обезвреживание инструментов с помощью термической обработки. Это инструменты имеющие зеркальные поверхности, оптическое и радиоэлектронное оборудование, режущие и колющие инструменты , кетгут, различные изделия из термонеустойчивых пластмасс ( зонды, катетеры ), не выдерживают паровую, воздушную, и химическую ( с помощью растворов )стерилизацию. Для газовой стерилизации пригодны толь те соединения, которые обладают спороцидным действием: окись этилена, метилбромид и их смеси, формальдегид и озон. ;

-в промышленных условиях используют гамма – излучение и ускоренные электроны, которые применяют для стерилизации перевязочного материала, хирургических инструментов, некоторых лекарственных препаратов, сывороток и др. Иначе этот метод называет ещё холодной стерилизацией. Ионизирующее излучение воздействует на обменные процессы микробной клетки, оказывая бактерицидное действие. Для стерилизации ионизирующим излучением имеются специальные установки, где происходит обработка материалов в упакованном виде, который может сохранять стерильность до нескольких лет.

Ионизирующее излучение для стерилизации применяют широко на промышленных предприятиях, изготавливающих медицинские изделия одноразового пользования.

Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемого изделия.

Для проведения эффективной стерилизации медицинского инструментария и материалов в лечебно – профилактических учреждениях созданы и довольно успешно функционируют централизованные стерилизационные отделения ( ЦСО ) , оборудованные и оснащенные всеми необходимыми средствами и аппаратурой, в которых трудится профессионально подготовленный контингент.

Стерилизационное отделение осуществляет: прием использованных инструментов; разборку сортировку, очистку инструментов и изделий медицинского назначения; упаковку и стерилизацию инструментов, материала и изделий медицинского назначения; выдачу стерильного инструментария, материалов, а также изделий одноразового применения; самоконтроль за качеством предстерилизационной очистки и эффективностью работы стерилизационной аппаратуры.

Набор помещений ЦСО и их площадь должны соответствовать СНИП – 11 –69 – 78 ЛПУ. Ответственность за организацию работы ЦСО возлагается на главного врача, государственная санитарно – эпидемиологическая служба осуществляет предупредительный и текущий санитарный надзор за его деятельностью.

 

Дезинсекция. Камерная дезинфекция, дезинсекция и санитарная обработка

Дезинсекция – учение о способах и средствах борьбы с членистоногими, которые передают человеку заразные заболевания или причиняют ему экономический… Термин "дезинсекция" ( от лат. insectum - насекомое и des - франц.… В последние годы принципиально изменились подходы к борьбе с вредными членистоногими: конечной целью мероприятий все…

Инсектицидные препараты на основе пиретринов и пиретроидов характеризуются: широким спектром инсектицидного действия, быстрым и глубоким парализующим действием (нокдаун), возбуждающим действием, стимулирующим полет летающих насекомых и двигательную активность у ползающих.

Степень токсичности для теплокровных у представителей групп пиретринов и пиретроидов неодинакова. Среди них имеются как малотоксичные соединения (неопинамин, перметрин и др.), так и высокотоксичные (дельтаметрин, фенпропатрин, цигалотрин и др.), раздражающими свойствами обладают дельтаметрин, фенвалерат.

Одно из основных преимуществ данной группы препаратов является их высокая избирательная токсичность в отношении членистоногих.

Начиная с древних времен, и по настоящее время естественные инсектициды растительного происхождения находят широкое применение в практике медицинской дезинсекции. Одним из старейших инсектицидов растительного происхождения является «пиретрум» - «персидский порошок», который по спектру, быстроте действия на насекомых и безвредности для человека остается непревзойденным. Пиретрум представляет собой высушенные и мелкоразмолотые цветки далматской и кавказской ромашек.

По механизму действия на организм членистоногих пиретроиды относятся к сильнодействующим нейротропным ядам, причем действие их более выражено при пониженных температурах. Препараты влияют на оболочки нервов, а высокая активность обменных процессов в организме насекомого при повышенных температурах способствует более быстрому распаду веществ, ослабляя тем самым их действие и вызывая обратимость эффекта.

Широкое применение в медицинской дезинсекции в настоящее время получили следующие препараты: аджиоципер, циперметрин, малкорд, сипаз, циперитор, гелетрин, микроцин, орадельт и другие.

Фосфорорганические соединения ( ФОС ) на сегодняшний день это около четверти всех используемых инсектицидных препаратов, представляющие фосфорорганические соединения - сложные эфиры фосфорных кислот.

Преимуществом этих препаратов этой группы является:

- широкий спектр инсектицидного действия;

- малая стойкость на объектах внешней среды ( 3 – 4 недели );

- значительная часть препаратов разлагается на нетоксичные компоненты в воде, почве и растительности;

- невозможность кумуляции в организме млекопитающих;

- остатки ФОС в пищевых продуктах быстро разлагаются при термической обработке.

В качестве недостатков этих препаратов можно отметить:

- высокая токсичность для млекопитающих, что влечет за собой необходимость соблюдения мер предосторожности при их обработке;

- свойство препаратов этой группы проникать через неповрежденную кожу и вызывать отравления.

В основе механизма действия ФОС лежит подавление функции ряда ферментов, относящихся к эстеразам, в частности холинэстеразы, что способствует накоплению в организме холина, приводящего к отравлению и смерти млекопитающего и членистоногого.

В дезинсекционнй практике нашли своё применение такие коммерческие препараты как байтекс, мастер, микрофос, сульфидофос, сумитион – МК, фуфанон, эмпайр – 20 и др.

Карбаматы – это группа инсектицидов, относящихся к производным карбаминовых кислот. Карбаматы характеризуются разной степенью токсичности и кумуляции в организме теплокровных..

Соединения ингибируют фермент - холинолтеразу и по биологической активности близки к ФОС. Для этой группы препаратов характерным является поражение нервной, кроветворной и эндокринной систем млекопитающих. Большинство инсектицидов обладают эмбриотоксическим, бластомогенным и мутагенным действием, а также аллергенными свойствами.

Положительным свойством данной группы является сравнительно быстрое разложение во внешней среде. В настоящее время в медицинской дезинсекции применяются препараты: дикрезил, байгон, и др.

К инсектициды различных химических групп относятся борная кислота (боракс)и препараты фенакс, фенаксин, куда входит данное соединение; бура, гидрометилнон (комбат) является кишечным инсектицидом.

Особо хочется остановиться на группе соединений относящихся к фенилпирозолам. Наиболее широко из этой группы применяются препараты, в которых действующим веществом является фипрорнил.

Фипронил относится к соединениям II класса опасности, по своему механизму этот вещество блокирует деятельность нервных рецепторов в организме. Высоко эффективен в отношении устойчивых к пиретроидам и ФОС популяциям насекомых. Как кишечный яд применяют в сельском хозяйстве для борьбы с вредителями растений. В медицинской дезинсекции фипронил используется гелевых композициях Нэкса-терминатор, приманок-контейнеров для уничтожения тараканов Голиаф.

Помимо этих химических соединений в медицинской дезинсекции применяются и многочисленные другие препараты и композиции составленные из перечисленных инсектицидов.

Камерная дезинфекция и дезинсекция целесообразно применять для обработки одежды и постельных принадлежностей больных инфекционными болезнями: чума, холера, возвратный, эпидемический сыпной тиф, легочная форма лихорадки – КУ, сибирская язва, высококонтагиозные вирусные геморрагические лихорадки, брюшной тиф, паратифы, туберкулез, проказа, дифтерия, грибковые заболевания волос, кожи и ногтей ( микроспория, фавус, трихофития ), чесотка, педикулез.

Для её реализации используются дезинфекционные камеры, представляющие собой устройства для проведения паровой, паровоздушной, пароформалиновой, воздушной и газовой дезинфекции и дезинсекции.

Методики проведения дезинсекции в камерах изложены в " Инструкции по дезинфекции и дезинсекции в паровоздушноформалиновых, паровых и комбинированных дезинфекционных камерах ", утвержденных Минздравом РФ в 1996г.

Камеры устанавливаются в лечебно – профилактических и учреждениях государственной санитарно – эпидемиологической службы, а также на отдельных промышленных предприятиях. В зависимости от средства используемого для обеззараживания камеры подразделяются на ряд типов: паровоздушно – формалиновые, паровые, воздушные, газовые, комбинированные. По характеру они подразделяются на постоянные, передвижные и переносные. Камеры обслуживает профессиональный дезинфекционный контингент, имеющий допуск к работе со стороны Котлнадзора.

Показаниями к проведению камерной обработки являются следующие заболевания: брюшной тиф, дизентерия, вирусный гепатит, туберкулез, ку – лихорадка, микроспория, трихофития, фавус, сибирская язва, педикулез, сыпной тиф, болезнь Бриля, чесотка и другие.

Санитарная обработка представляет собой комплекс мероприятий по обеззараживанию кожных покровов человека, его одежды, постельных принадлежностей. Она может быть полной или частичной. Частичная обработка слагается из стрижки волос, мытья под душем с одновременной сменой белья и дезинсекцией ( дезинфекцией ) белья.

При полной санитарной обработке в дополнение к обработке людей и личных вещей проводят камерную обработку их постельных принадлежностей и дезинфекцию помещения в очаге инфекции. Санитарную обработку проводят прежде всего для профилактики паразитарных тифов и осуществляется она в санпропускниках. Санпропускник представляет собой баню пропускного типа с одной или несколькими дезинфекционными камерами.

Санитарные пропускники формируются при ЦГСЭНах, дезинфекционных центрах, изоляционно – пропускных пунктах на транспортных узлах, при вокзалах, и некоторых промышленных предприятиях.

 

 

Дератизация, ее методы и средства.

Грызуны всеядны, они потребляют в пищу те же продукты, что и человек. Тем самым, уничтожают в огромных количествах человеческие продуктовые запасы,… Грызуны являются источниками инфекции многих заболеваний передающихся… Грызуны, являясь дополнительными хозяевами некоторых видов цистод, трематод инематод. У грызунов отмечены…

Контроль эффективности и качества дезинфекционных мероприятий.

При проведении визуального метода выясняют: - санитарное состояние объекта; - своевременность проведения дезифекционных мероприятий;

Количество вещей взятых для камерной обработки.

Химический контроль используют для определения содержания действующих веществ и соответствия концентраций рабочих растворов концентрациям, предусмотренным инструкциями.

При отборе проб отмечают дату их взятия; когда и кем приготовлен дезинфицирующий раствор, какая концентрация указана на этикетке. При контроле качества заключительной дезинфекции пробы для химического анализа лучше всего отбирать в то время, когда дезинфекторы находятся в очаге. Особенно важно взятие проб при проведении дезинфекции в очагах туберкулеза, вирусного гепатита и грибковых болезней.

 

Определение количества действующего вещества в растворах или сухого препарата проводится в лабораторных условиях.

Для быстрого определения качества дезинфекции проведенной с помощью хлорсодержащих препаратов применяется экспресс метод определения концентрации активного хлора с помощью метиловой индикаторной бумаги.

Обнаружение во взятых пробах меньшего, чем требуется количество действующего вещества служит доказательством плохого выполнения дезинфекции.

При контроле за качеством профилактической и текущей дезинфекции применяется иод – крахмальный метод контроля. Метод основан на цветной реакции иода с крахмалом. При взаимодействии с раствором иодита калия хлор вытесняет из раствора иод и занимает его место.

Этим методом следует контролировать обеззараживание поверхностей тех предметов, которые представляют эпидемическую опасность: посуду для еды и выделений, игрушки, полы, стены, подоконники , мебель и другие вещи увлажняемые при дезинфекции. При проведении этого метода количество проб должно быть как можно с большого количества мест, контроль зачастую проводится внезапно и результаты его обнаруживаются мгновенно.

Бактериологический контроль в очаге кишечных инфекций проводят путем обнаружения санитарно – показательной кишечной палочки методами смыва или соскобов.

Бактериологический контроль качества заключительной дезинфекции проводят внезапно для персонала и его организует врач или помощник санитарного врача. При текущей или профилактической дезинфекции качество контролируют в любое время, заключительной не позже чем через 30 – 45 мин. После её окончания.

При контроле заключительной дезинфекции пробы берут со столовой и чайной посуды, ложек, ножей, обеденного стола, игрушек, дверных ручек и др. предметов.

При текущей дезинфекции кроме перечисленных предметов пробы берутся с ветоши, для мытья посуды и столов, рук и халатов медицинского персонала. При контроле пищеблоков ЛПУ со столовой посуды, разделочного и уборочного инвентаря, оборудования, рук и халатов работников пищеблока.

Смывы берут ватными тампонами на палочках, которые смачиваю в 1% растворе тиосульфат или среды обогащения. Смывы берут не менее 10 шт. в квартирах, и не менее 30 в детских дошкольных и лечебно – профилактических учреждениях. Каждый смыв производят с площади не менее 200 – 300 кв. см.

Тем смывы помещаются в среду Хейфеца, которая позволяет через 18 – 24 часа получить результат по изменению или не изменению цвета среды.

Удовлетворительную оценку качества дезинфекции дают при отсутствии роста кишечной палочки во всех исследуемых пробах, неудовлетворительную оценку – при обнаружении кишечной палочки хотя бы в одной из проб.

При контроле дезинфекции в очагах инфекций дыхательных путей включая туберкулез, ведут поиск стафилоккока. Контрольные смывы делают также как и при кишечных инфекциях, оценка контроля также идентична методике кишечных инфекций.

Комплексная оценка эффективности заключительной дезинфекции определяется по следующим показателям:

- процент охвата заключительной дезинфекцией эпидемических очагов от числа подлежащих не менее 95 %.

- выполнение заключительной дезинфекции в очагах в течении 12 часов после изоляции инфекционного больного из организованного коллектива – своевременность не менее 90 %.

- процент проведенных камерных дезинфекций от числа подлежащих не менее 95 %.

- контроль качества ( визуальный, химический, лабораторный – одновременно ) заключительной дезинфекции не менее чем в 1 % квартирных очагов и не менее чем в 10 % в организованных коллективах, в период от 1 до 3 часов после окончания дезинфекции.

- отбор в очаге не менее 10 смывов, 2 проб дезрастворов, 10 проб экспресс анализы остаточных количеств дез. средств.

- бак. контроль дез камер не реже 1 раза в квартал.

Основными показателями качества текущей дезинфекции являются:

- охват контролем эпид.очагов с применением лабораторных методов;

- минимальные количества взятых анализов в одном очаге: бактериологические смывы 10 шт.; дез.средства сухие и влажные по 1 пробе;

Качество дезинфекции считается удовлетворительным, если число неудовлетворительных смывов менее 3 % , количество отрицательных проб на наличие дез.средств не более 3%; а число неудовлетворительных анализов дез.растворов не выше 5%.

Требования по организации контроля за дезинфекцией и стерилизацией в ЛПу контроль за дезинфекционными и стерилизационными мероприятиями проводят представители ЦГСЭН, одновременно с контролем санитарно – противоэпидемического режима.

В стационарах инфекционного и хирургического профиля, роддомах и детских учреждениях, в подразделениях стоматологии и станциях переливания крови – не реже 1 раз в квартал. За дез. камерами и ЦСО также не реже 1 раза в квартал. В терапевтических стационарах, поликлиниках, стационарах не реже 2 раз в год. В остальных ЛПУ не реже 1 раза в год.

Показатели качества дезинфекции – первого этапа стерилизации : проводится с целью определения содержания действующих веществ в дезсредствах и и соотвествия концентрации рабочих растворов заданным. Осуществляется двумя методами йодометрическим ( развернутым ) методом, который проводится в лаборатории и экспресс - –робами ( метоловой и йод – крахмальной ).

- определение заниженных концентраций дез.средств не более чем в 5 % отобранных проб;

- выявление неудовлетворительных экспресс- проб на остаточное количество дез. средств не более чем в 2 % от числа поставленных проб каждого вида.

О качестве дезинфекции изделий медицинского назначения судят после ее проведения по отсутствию на изделиях медицинского назначения золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Контролю подлежит 1 % от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3 – 5 единиц. Контроль качества дезинфекции осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят с поверхностей изделий медицинского назначения до проведения дезинфекции и после ее.

При наличии роста микроорганизмов на агаре идентификацию выделенных микроорганизмов проводят в соответствии с действующими методическими документами. Дезинфекцию считают эффективной при отсуствии роста микроорганизмов указанных выше.

Показатели качества предстерилизационной очистки- второго этапа стерилизации. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят представители ЦГСЭН 1 раз в квартал. Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных ежедневно, в отделениях – не реже1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра ЦСО, отделения. Контролю подлежит: в ЦСО – 1% от каждого наименования обработанных за смену, в отделениях - 1 % одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менеее 3 единиц.

Качество оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств ( на качество отмывки от синтетических средств лотос, астра, айна ). На биолот, прогресс фенолфталеин не реагирует.

- отсутствие положительных проб на остаточное количество крови;

- отсутствие положительных проб на остаточное количество щелочных компонентов синтетических моющих средств и остатков масляных лекарственных веществ;

Контролю подлежит на менее 1 % каждого вида изделий обработанных за сутки ( при неудовлетворительных пробах вся партия подлежит повторной обработке до получения отрицательных результатов). Результат отражают в журнале по форме № 366/у.

Учет результатов постановки пробы: при положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее чем через 1 минуту появляется вначале фиолетовое, а затем быстро в течении нескольких секунд, в розовато – сиреневатое или бурое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидоз растительного происхождения, окислителей ( хлорамина, хлорной извести, стирального порошка и ржавчины. При наличии ржавчины и окислителей появляется бурое окрашивание реактива, а в остальных случаях происходит окрашивание в розово – сиреневый цвет.

При положительной амидопириновой пробе с наличием на изделиях остаточных количеств крови свидетельствует немедленное или через 1 мин. После контакта реактива с кровью появление сине – фиолетового окрашивания различной интенсивности. При постановке азопирамовой и амидопириновых проб окрашивание реактивов, наступившее позже чем через 1 мин. После постановки пробы, не учитывается. При положительной фенофталеиновой пробе о наличии в изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива.

Оценка качества работы паровых и воздушных стерилизаторов по следующим показателям: температура, давление в стерилизационной камере и эффективность воздействия на споры с тест культуре в биотесте, методы исследования при этом: химический, физический и биологический. Физический и химический методы контроля являются методами оперативного контроля режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.

Проверку температурного режима осуществляют с помощью максимальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизаторов.

Для контроля температуры используют также химические индикаторы: индикаторы типа ИС, химические тесты, которые помещают в контрольные точки.

Индикаторы типа ИС представляют собой полоску бумаги с нанесенным на нее индикаторным слоем. Химические тесты представляют собой стеклянные трубки, содержащие химические соединения или их смеси с красителями. Изменения окраски или агрегатного состояния химических соединений свидетельствует о достижении заданной температуры в стерилизаторе после окончания стерилизации. В качестве химических соединений используют: для 120 ⁰ С – бензойную кислоту, серу элементарную; для 132 ⁰ С карбамид, серу чистую, никотиамид. При контроле воздушных стерилизаторов для 160 ⁰ С левомицетин, для 180 ⁰ С винную кислоту. гидрохинин, тиомочевину.

Результаты фиксируются медицинским персоналом в журнале по форме № 257/у.

Бактериологический контроль работы стерилизационных аппаратов осуществляется с помощью биотестов, оценивая гибель спор термоустойчивых микроорганизмов. Биотесты представляю собой дозированное количество спор тест - культуры на носителе помещенном в упаковку: инсулиновые флакончики, чашечки из алюминиевой фольги, диски фильтровальной бумаги. Биотесты помещают в те же контрольные точки стерилизационной камеры , что и средства физического и химического контроля. Основанием для заключения об эффективной работе стерилизационной аппаратуры является:

- отсутствие роста микроорганизмов при посеве всех биологических тестов на питательные среды:

- изменение исходного состояния ( цвет, агрегатное состояние ) химических индикаторов;

- отсутствие высева микрофлоры со стерильных изделий.

Контроль эффективности работы паровых и воздушных стерилизаторов производится закладыванием 3 – 6 – 9 бактериальных химических тестов в 3 плоскостях, в зависимости от объема и типа аппарата.

Контроль стерильности изделийпроводят путем погружения в питательные среды целогго изделия, или его части с последующим инкубированием и посевом на две питательные среды: тиогликолевую – на аэробные и анаэробные бактерии и бульон Сабуро – на грибы.

Показатели качества дезинсекции:

1. По синантропным мухам, удовлетворительными сезонными показателями являются: в городах до 1 особи в помещении;

- на селе – до 5 особей вне помещения;

- в населенных пунктах с преобладанием индивидуальной застройки до 5 особей в помещениях и до 10 особей вне помещений на единицу учета в сутки;

- наличие в отбросах до 5 личинок на единицу учета и отсутствие куколок в отбросах и почве, а также отсутствие зимнего выплода мух. При достижении указанных показателей обработки инсектицидами не проводятся.

2. По комарам удовлетворительными показателями являются:

-по подвальным комарам- наличие окрыленных комаров менее 1 на 1 кв.м. в среднем;

-по комарам в открытых стациях – наличие в открытом водоеме личинок комаров старшего возраста менее 100 экз. на 1 кв.м. и наличие окрыленных комаров менее 2 экз. на предплечье за 20 мин. ;

-по малярийным комарам критерием проведения обработки является наличие единичных личинок комаров старшего возраста. Критерием оценки эффективности дезинсекции является гибель комаров на 95 % и полная гибель малярийных комаров.

3.По вшам удовлетворительным показателем являются: отсутствие насекомых и гнид через 7 дней после обработки, подтвержденное повторным контролем.

4. По синантропным тараканам показателями являются:

- заселение насекомыми до 15 % площади объекта, требует однократной дезинсекции с последующим контролем ее эффективности и повторным в случае необходимости;

- заселение свыше 15 % требует ежемесячной дезинсекции.

Критерием оценки эффективности является отсутствие насекомых в течении 3 месяцев рослее обработки объекта ( подтвержденное ежемесячным контролем ). Такой объект считается условно освобожденным и его площадь включают в освобожденную от насекомых площадь.

Удовлетворительными показателями работы организаций, осуществляющих борьбу с тараканами, является заселенная площадь не более 20 % от обслуживаемой и не более 5 % брака вывяленного при объективном контроле освобожденной площади. Процент заселенной тараканами площади определяется ежеквартально и в среднем за год.

Показатели качества дератизации оцениваются ежемесячно по:

- проценту заселенных грызунами объектов;

- проценту площади, заселенной грызунами, от обслуживаемой по договорам;

- проценту, заселенной грызунами площади, от числа осмотренных;

- числу отловленных грызунов на 100 ловушко – суток на заселенных объектах ( оценивается 2 раза в год );

Дератизация считается неудовлетворительной , если в помещении, заявленном как свободном от грызунов, т.е. после проведения истребительных работ на протяжении 3 месяцев имеются свежие признаки их жизнедеятельности.

Камеры, находящиеся в эксплуатации, должны систематически подвергаться проверке технического состояния и контролю за правильностью эксплуатации и эффективностью их работы.

При проверке технического состояния камеры необходимо осмотреть и проверить: термометры, психрометры, манометры, вентили, форсунку, предохранительные клапаны. Для осуществления контроля за правильностью эксплуатации камер проверяют их объемы и способы загрузки; проводится проверка термического режима и эффективности процессов дезинфекции с помощью тест – объектов – биологический контроль, проверка соблюдений требований противоэпидемического режима в предкамерных помещениях и правил личной профилактики персонала, обслуживающего камеры; проверка ведения журналов камеры, отображающих все этапы камерной обработки.

При проведении термического контроля используют максимальные термометры, размещаемые в трёх плоскостях. При одновременном проведении термического и биологического контролей тест – объекты, тест – инсекты размещают вместе с термометрами. Тесты для биологического контроля получают в биологической лаборатории. Тест – объектом для проверки эффективности дезинфекции вещей, зараженными вегетативными формами микробов, служит культура золотистого стафилококка.

Для контроля камер, обеззараживающих вещи из очага туберкулезной инфекции, используют тесты, обсемененные культурой кислотоупорного сапрофита – микобактерии В – 5. Тест – объектом для проверки эффективности обеззараживания вещей, зараженных споровыми формами, служит культура антрокоида.

Проверку инсектицидного эффекта осуществляют с помощью тест – инсектов – вшей и их гнид.

 

Заключение.

Дезинфекция, как мероприятие, направленное на разрыв механизма передачи, используется как с профилактической целью, так и по эпидемическим показаниям. Будущим врачам необходимо хорошо знать и представлять как проводятся различные виды дезинфекции, т.к. при некоторых видах инфекции дезинфекция проводится в очаге самостоятельно после инструктажа педиатра или терапевта. Врач медико – профилактического дела в своей работе часто занимается вопросами организации дезинфекционных мероприятий в детских, лечебно – профилактических учреждениях и очагах инфекционных заболеваний.

Доцент кафедры инфекционных болезней Б.Г.Перевозчиков